2. 复旦大学附属中山医院心内科 上海 200032;
3. 上海市心血管病研究所 上海 200032;
4. 国家放射与治疗临床医学研究中心 上海 200032
2. Department of Cardiology, Zhongshan Hospital, Fudan University, Shanghai 200032, China;
3. Shanghai Institute of Cardiovascular Diseases, Shanghai 200032, China;
4. National Clinical Research Center for Interventional Medicine, Shanghai 200032, China
房间隔穿刺(atrial septum puncture,ASP)是股静脉途径将右心房和左心房连通,再进行左心相关手术的一个关键步骤[1-2]。由于猪心脏解剖学和生理学特征与人类相似,因此许多实验研究选用猪作为动物模型。猪的房间隔组织比人更短、更柔软和脆弱,目前并没有专用于猪ASP的相关实验设备。运用现有的进行ASP的方法(包括导丝、激光导管等)[3-5],即使操作者有丰富的动物实验经验,仍然可能会发生心脏穿孔等并发症。心腔内超声心动图(intra-cardiac echocardiography,ICE)能准确显示房间隔、卵圆窝及其周围组织[6-7],目前尚缺乏ICE用于猪ASP的相关报道。本研究通过对ASP方法的改善,使操作更方便,心脏穿孔或心包积液的发生率更低,使ASP更安全有效,现报道如下。
材料和方法实验动物 选用28只健康的约克夏白猪,由复旦大学附属中山医院实验动物房提供。体质量为30.0~50.0 kg,平均(38.5±5.9)kg,中位数38.5 kg(95%CI:36.3~40.8 kg);猪龄60.0~90.0天,平均(71.1±8.1)天,中位数70.5天(95%CI:68.1~71.0天)。首先进行阿司匹林(0.1 g/片)预处理,每天1次,持续3天。所有猪在术前通过经胸超声心动图(transthoracic echocardiography,TTE)证实无卵圆孔未闭或房间隔缺损。
实验准备 ASP操作时间定义为房间隔穿刺鞘进入股静脉到左心房的时间;麻醉时间定义为猪开始麻醉到开始手术的时间;手术时间定义为血管鞘插入股静脉到球囊房间隔扩张术后。肺血流/全身血流(Qp/Qs)=(SaO2%-MVO2%)/(SaO2%-PaO2%)。其中SaO2%、PaO2%和MVO2%分别代表全身动脉、肺动脉、混合静脉血中的血氧饱和度。MVO2%=(上腔静脉O2%+3×下腔静脉O2%)/4。实验操作经复旦大学实验动物关怀和伦理委员会许可(批准号:2021-041)。
手术操作 用戊巴比妥钠(1 mL/kg)对猪进行静脉麻醉,麻醉成功后将9F血管鞘插入猪右侧股静脉。在数字减影血管造影(digital subtraction angiography,DSA)引导下,心内科中高年资医师将8.5 F房间隔穿刺鞘(北京心诺普医疗器械有限公司,图 1)送入右心房。通过多个平面(图 2A)的成像引导,将穿刺鞘的尖端顶住卵圆窝,ICE(Acuson SC200,德国西门子公司)可产生“帐篷标志”(图 3A)。将一根直径为0.014英寸SION导丝(日本朝日医疗株式会社,图 4),从尾端进入房间隔穿刺鞘,用其尾端进行ASP(图 2B)。在DSA和ICE指导下,用SION导丝的尾端穿刺房间隔后进入左心房(图 3B)。在SION导丝的引导下,将房间隔穿刺鞘逐渐地缓慢推进至左心房(图 2C)。在穿刺鞘进入左心房后,用Amplatz超硬导丝(美国库克医疗公司)替代SION导丝,移除穿刺鞘并保留超硬导丝。在超硬导丝的支撑下,球囊扩张导管(3~5 mm,上海波士顿科学公司)进入左心房后行逐级球囊房间隔扩张术(balloon atrial septostomy,BAS),在房间隔上分别使用3个逐渐变大的球囊进行扩张,扩张球囊的直径分别为3 mm(H74939171030240,Mustang 3.0×20,40 cm)、4 mm(H74939171040240,Mustang 4.0×20,40 cm)和5 mm(H74939171050240,Mustang 5.0×20,40 cm)(图 2D)。手术操作中,注意动作轻柔,ICE定位明确后再进行穿刺。扩张后,采用TTE评估房间隔分流和心包积液等并发症(图 5)。
统计学方法 使用SPSS 22.0进行统计分析,计算Qp/Qs平均值及平均ASP时间,连续参数用x±s表示。
结果成功对28只约克夏白猪进行ASP,平均麻醉时间为(22.8±4.1)min(中位数23.5 min,95%CI:21.1~24.2 min),平均手术时间为(9.2±1.3)min(中位数9.0 min,95%CI:8.7~9.7 min),平均房间隔穿刺时间为(40.6±7.3)s(中位数41.0 s,95%CI:37.8~43.3 s)。穿刺后,所有猪均采用球囊扩张导管进行逐级BAS。
术后TTE提示:房间隔出现左向右分流(left to right shunt,LRS),平均Qp/Qs为1.3±0.2(中位数1.3,95%CI:1.3~1.4)(图 5)。手术操作中无动物死亡、心包积液、心脏穿孔、瓣膜损伤或血栓形成。术后随访4周,随访期间28只猪均未出现死亡,平均体重为(66.8±5.6)kg (中位数67.0 kg,95%CI:64.7~68.7 kg)。随访心超提示:28只猪的房间隔穿刺孔均内皮化导致闭合。
讨论本研究探索了一种创新的ASP方法,在ICE引导下,使用0.014英寸SION导丝尾端对猪进行ASP是安全且有效的。约克夏白猪又叫大白猪,是国内最常见的猪品种,体型匀称,体格大,便于进行ASP。猪的房间隔柔软、脆弱、短小,直径约1.5~2.0 cm[8]。对于猪ASP,平时所用的穿刺针较硬,容易滑落和损伤周围组织。在穿刺过程中,较硬的穿刺针在穿透房间隔瞬间突然释放的力可能导致其他组织(例如左心房游离壁)的意外损伤,诱发心包积液或心脏穿孔。心包填塞是ASP最常见的并发症,发生率约为1%[9-10]。0.014英寸SION导丝尾端比穿刺针更柔软、更细,穿刺鞘固定在房间隔右心房面的卵圆窝后,使用SION导丝尾端进行ASP,可一次性穿刺成功。也有研究者使用更粗的导丝进行穿刺,Jiang等[5]使用0.035英寸的导丝对11只猪进行ASP,其中1只猪(1/11)出现轻度心包积液。本研究使用更细的0.014英寸SION导丝,全部穿刺成功,未出现瓣膜损伤、血栓或心包积液。因此,更细的0.014英寸SION导丝不仅可以完成ASP,同时还可能更好地避免并发症,减少对房间隔周围组织的损伤和牵引。
房间隔穿刺前,在ICE引导下,将穿刺鞘定位在房间隔的卵圆窝至关重要。ICE在很大程度上弥补了DSA的弱点,可以清晰显示卵圆窝及周围结构。通过最直接的图像观看穿刺鞘在房间隔的卵圆窝上(“帐篷标志”)[11-12]。Raval等[3]报导了在实时MRI和激光导管指导下,对10只猪进行ASP,其中1只猪(1/10)由于电路连接损坏而发生下腔静脉穿孔。在ICE指导下,术者可准确识别卵圆窝及其周围组织,减少与ASP相关并发症的发生。对于左心房偏小、先天性心脏结构异常的猪,在ICE指导下准确定位穿刺鞘,可减少心包积液,缩短手术时间。房间隔平均穿刺时间仅为(40.6±8.7) s。
本研究中,所有猪均采用穿刺后BAS,平均Qp/Qs为1.3±0.2。Abdalla等[4]使用激光进行ASP,未采用穿刺后BAS,研究发现房间隔组织仍然存在弹性回缩,在压平周围组织的张力下,激光产生的孔径仅为0.9 mm。Raval等[3]在ASP后进行BAS,研究结果与本研究一致,发现BAS可将平均Qp/Qs从1.0±0.1增加至1.3±0.2,房间隔穿刺孔增大更利于鞘管通过等手术操作。
本研究存在一定不足:未进一步进行猪心脏的解剖,术后无法更直观地观察心房间隔的穿刺孔情况。但我们进行了超声检查,计算出Qp/Qs,可以证明ASP手术成功。
在ICE指导下,使用0.014英寸SION导丝尾端对猪进行ASP是安全且有效的,这可能成为猪动物实验的创新且高效的手术方法。
作者贡献声明 杨力凡 数据收集、统计和分析,论文撰写和修改。潘文志,张蕾,张晓春 动物实验,论文构思。李明飞,龙愉良 数据收集。管丽华,周达新 动物实验,论文构思和修订。葛均波 论文构思。
利益冲突声明 所有作者均声明不存在利益冲突。
[1] |
COPE C. Technique for transseptal catheterization of the left atrium; preliminary report[J]. J Thorac Surg, 1959, 37(4): 482-486.
[DOI]
|
[2] |
ROSS JJ, BRAUNWALD E, MORROW AG. Transseptal left atrial puncture, new technique for the measurement of left atrial pressure in man[J]. Am J Cardiol, 1959, 3(5): 653-655.
[DOI]
|
[3] |
RAVAL AN, KARMARKAR PV, GUTTMAN MA, et al. Real-time MRI guided atrial septal puncture and balloon septostomy in swine[J]. Catheter Cardiovasc Interv, 2006, 67(4): 637-643.
[DOI]
|
[4] |
ELAGHA AA, KOCATURK O, GUTTMAN MA, et al. Real-time MR imaging-guided laser atrial septal puncture in swine[J]. J Vasc Interv Radiol, 2008, 19(9): 1347-1353.
[DOI]
|
[5] |
JIANG WJ, MA N, XU XT, et al. Establishment of a porcine model of patent foramen ovale[J]. Neurol Res, 2006, 28(1): 82-86.
[DOI]
|
[6] |
RIGATELLI G, DELL'AVVOCATA F, RONCO F, et al. Patent oval foramen transcatheter closure: results of a strategy based on tailoring the device to the specific patient's anatomy[J]. Cardiol Young, 2010, 20(2): 144-149.
[DOI]
|
[7] |
YOSHIMOTO H, SUDA K, KISHIMOTO S, et al. Intra-cardiac echocardiography-guided stent implantation into stenosed superior vena cava in a patient with a history of contrast anaphylaxis[J]. Heart Vessels, 2016, 31(4): 631-634.
[DOI]
|
[8] |
FINLAY MC, MOSSE CA, COLCHESTER RJ, et al. Through-needle all-optical ultrasound imaging in vivo: a preclinical swine study[J]. Light Sci Appl, 2017, 6(12): e17103.
[DOI]
|
[9] |
KATRITSIS GD, SIONTIS GC, GIAZITZOGLOU E, et al. Complications of transseptal catheterization for different cardiac procedures[J]. Int J Cardiol, 2013, 168(6): 5352-5354.
[DOI]
|
[10] |
HSU LF, JAIS P, HOCINI M, et al. Incidence and prevention of cardiac tamponade complicating ablation for atrial fibrillation[J]. Pacing Clin Electrophysiol, 2005, 28(Suppl 1): S106-S109.
|
[11] |
ENRIQUEZ A, SAENZ LC, ROSSO R, et al. Use of intracardiac echocardiography in interventional cardiology: working with the anatomy rather than fighting it[J]. Circulation, 2018, 137(21): 2278-2294.
[DOI]
|
[12] |
DAOUD EG, KALBFLEISCH SJ, HUMMEL JD. Intracardiac echocardiography to guide transseptal left heart catheterization for radiofrequency catheter ablation[J]. J Cardiovasc Electrophysiol, 1999, 10(3): 358-363.
[DOI]
|