微RNA(microRNAs, miRNAs)的突变和异常表达与各种人体肿瘤的发生发展相关, miRNAs能调控多种肿瘤相关基因的表达, 可作为癌基因或抑癌基因而发挥作用[1]。在胃癌、结肠癌、甲状腺癌等肿瘤组织中miR-338-3p的表达水平明显低于正常组织, miR-338-3p可能作为抑癌基因参与肿瘤侵袭和转移[2-7]。MET转录调剂因子MACC1在结肠癌、胃癌、肺癌和肝细胞癌等多种恶性肿瘤组织中表达异常, 与肿瘤的侵袭和转移关系密切, 在晚期患者的肿瘤组织中表达明显升高, 可作为评价患者预后和转归的肿瘤标志物[8-11]。
研究表明, 在胃癌、肝癌、宫颈癌等恶性肿瘤组织中miR-338-3p可靶向调控MACC1基因, 进而参与肿瘤的侵袭和转移[12-14]。目前miR-338-3p在卵巢上皮性癌(epithelial ovarian cancer, EOC)组织中的表达情况及其与MACC1基因的相互关系尚不清楚。本研究采用实时荧光定量PCR技术检测miR-338-3p和MACC1基因在正常卵巢组织、良性卵巢肿瘤及EOC中的表达情况, 初步分析二者表达的相关性及其与卵巢癌临床病理参数之间的关系, 探讨其临床意义及其在卵巢癌发生发展中的作用。
资料和方法组织标本和临床资料 收集郑州大学第一附属医院妇科2012年10月至2015年10月间入组且随访资料完善的EOC患者105例, 所有入组患者均因妇科疾病首次就诊和接受治疗, 术前均无其他药物和放射治疗史, 未合并其他器官或系统严重疾病或恶性肿瘤。不符合上述标准和妊娠的患者均予以排除。105例入组患者均留取手术新鲜卵巢组织标本, 其中正常卵巢组织20例(标本来自因多发子宫肌瘤, 或单侧卵巢肿瘤且对侧卵巢无受累, 而接受子宫+双附件切除术或单纯双附件切除术的患者), 良性卵巢上皮性肿瘤组织20例(标本来自因良性卵巢肿瘤行卵巢囊肿剥除术或卵巢切除术的患者, 其中浆液性囊腺瘤16例, 黏液性囊腺瘤4例), 初诊EOC患者原发病灶组织65例。
65例EOC患者年龄28~76岁, 中位年龄50岁。早期患者(Ⅰ~Ⅱ期)行全面分期手术, 晚期患者(Ⅲ~Ⅳ期)行肿瘤细胞减灭术(残余病灶 < 1 cm)。临床分期(FIGO2014):Ⅰ期8例, Ⅱ期4例, Ⅲ期48例, Ⅳ期5例(其中腹壁肌层转移灶2例, 腹膜后非淋巴结转移灶3例)。组织学分级:高级别38例, 低级别27例。组织学类型:浆液性癌52例, 黏液性癌13例。腹膜后淋巴结清扫均达到肠系膜下动脉水平, 有淋巴结转移者32例(其中仅盆腔淋巴结转移者26例, 仅腹主动脉旁淋巴结转移者1例, 两处淋巴结均转移者5例), 无淋巴结转移者33例。
本研究所有组织标本的收集和用途均获得患者或家属知情同意, 并经郑州大学第一附属医院伦理委员会批准。3组患者(正常、良性、癌)的年龄、BMI等一般资料差异无统计学意义。EOC患者术后依据临床分期均接受规范化疗(多西他赛联合顺铂或卡铂)3~6个疗程, 耐药或复发患者采用二线化疗药物单药或联合化疗(包含多西他赛、吉西他滨、依托泊苷、脂质体阿霉素、奥沙利铂等)。
主要试剂 Trizol(美国Invitrogen公司), TaqMan MicroRNA逆转录试剂盒(美国Applied Biosystems公司), RevertAid first strand cDNA合成试剂盒(加拿大Fermentas公司), SYBR Green荧光定量PCR试剂盒(日本Takara公司)。
Real-time PCR检测 Trizol提取组织总RNA, 纯化后以分光光度计定量, 取2 μg总RNA参照TaqMan microRNA逆转录试剂盒说明书逆转录合成cDNA模板, 用于miR-338-3p表达的检测, 以U6作为内参。另取2 μg总RNA参照RevertAid first strand cDNA合成试剂盒说明书逆转录合成cDNA模板, 用于MACC1基因表达的检测, 以β-actin作为内参。逆转录产物参照SYBR Green荧光定量PCR试剂盒说明书, 采用Applied Biosystems 7500 Fast Real-Time PCR System(美国Thermo Fisher Scientific公司)进行PCR反应, PCR所用引物由上海生物工程有限公司合成, 引物序列见表 1, PCR反应条件为:95 ℃预变性10 min, 95 ℃变性15 s, 60 ℃退火60 s, 共40循环。每次PCR实验重复3次, 相对表达量用2-ΔΔCt表示。
Item | Sequences (5’-3’) | Length (bp) |
miR-338-3p | F:AACCGGTCCAGCATCAGTGATT | 74 |
R:CAGTGCAGGGTCCGAGGT | ||
U6 | F:CTCGCTTCGGCAGCACA | 70 |
R:AACGCTTCACGAATTTGCGT | ||
MACC1 | F:CATTTTCGGTCAGGAAGAATTGC | 163 |
R:TGGAAGCATTATTACCACGAAGG | ||
β-actin | F:CATGTACGTTGCTATCCAGGC | 250 |
R:CTCCTTAATGTCACGCACGAT | ||
F:Forward; R:Reverse. |
统计学方法 使用SPSS 21.0和GraphPad Prism 7软件进行数据分析和绘图, 计量资料用x±s表示, MACC1和miR-338-3p在不同卵巢组织中表达的差异性采用单因素ANOVA和非参数检验, 两组计量资料数据之间的差异性采用独立样本t检验或Bonferroni分析, MACC1和miR-338-3p表达之间的相关性采用Spearman相关性检验, MACC1和miR-338-3p表达与EOC临床病理参数的关系采用χ2检验或Fisher精确概率法。Kaplan-Meier法绘制生存曲线, 采用Log-rank检验和Cox回归模型分析影响EOC患者预后的危险因素, 以双侧α=0.05为检验水准。
结果不同卵巢组织中miR-338-3p和MACC1基因的表达 在正常卵巢组织、良性卵巢肿瘤组织和EOC组织中miR-338-3p的相对表达量分别为0.821±0.008、0.781±0.013和0.331±0.038, MACC1基因的相对表达量分别为0.059±0.011、0.315±0.034和0.774±0.025。与正常卵巢组织和良性卵巢肿瘤组织相比(图 1), EOC组织中miR-338-3p表达水平明显下调(F=77.916, P<0.001), MACC1基因表达水平明显上调(F=77.945, P<0.001)。
不同性质卵巢组织中miR-338-3p和MACC1基因表达的相关性 首先以TargetScan Human 7.1在线数据库为基础, 查询miRNA-靶基因调节关系, 进而利用starBase V2.0数据库交互查询5个权威miRNA靶标预测数据库(TargetScan、picTar、RNA22、PITA和miRanda)中miRNA-靶基因调节关系的交集, 显示MACC1基因是miR-338-3p下游的靶向调节基因之一。本研究的105例不同性质卵巢组织经Spearman相关性分析显示, miR-338-3p和MACC1的表达水平呈明显负相关(r=-0.968, P < 0.001, 图 2)。
EOC组织中miR-338-3p和MACC1基因表达与临床病理参数的关系 65例EOC组织中miR-338-3p和MACC1的中位相对表达水平分别为0.320±0.014和0.782±0.033, 据此划分为相对高表达(≥中位表达量)和相对低表达(<中位表达量)。分组统计显示, 临床分期越晚、组织级别越高、有淋巴结转移的EOC组织中miR-338-3p表达越低而MACC1表达越高(表 2)。
[n (%)] | |||||||||
Item | Case | MACC1 | χ2 | P | miR-338-3p | χ2 | P | ||
High | Low | High | Low | ||||||
Age (y) | |||||||||
< 50 | 31 | 14 (45.16) | 17 (54.84) | 17 (54.84) | 14 (45.16) | ||||
≥50 | 34 | 19 (55.88) | 15 (44.12) | 0.746 | 0.388 | 20 (58.82) | 14 (41.18) | 0.015 | 0.746 |
FIGO stage | |||||||||
Ⅰ-Ⅱ | 12 | 0 (0.00) | 12 (100.00) | 12 (100.00) | 0 (0.00) | ||||
Ⅲ-Ⅳ | 53 | 33 (62.26) | 20 (37.74) | - | <0.001(1) | 25 (47.17) | 28 (52.83) | - | 0.001(1) |
Histological grade | |||||||||
Low | 27 | 5 (18.52) | 22 (81.48) | 20 (74.07) | 7 (25.93) | ||||
High | 38 | 28 (73.68) | 10 (26.32) | 19.219 | <0.001 | 17 (44.74) | 21 (55.26) | 5.540 | 0.019 |
Histological classification | |||||||||
Serous | 52 | 29 (56.60) | 23 (43.40) | 28 (53.85) | 24 (46.15) | ||||
Mucinous | 13 | 4 (30.77) | 9 (69.23) | 1.697 | 0.193 | 9 (69.23) | 4 (30.77) | 0.474 | 0.491 |
Ascites | |||||||||
No | 16 | 5 (31.25) | 11 (68.75) | 12 (75.00) | 4 (25.00) | ||||
Yes | 49 | 28 (57.14) | 21 (42.86) | 3.235 | 0.072 | 25 (51.02) | 24 (48.98) | 1.935 | 0.164 |
Lymph node metastasis | |||||||||
No | 33 | 11 (33.33) | 22 (66.67) | 23 (69.70) | 10 (30.30) | ||||
Yes | 32 | 22 (68.75) | 10 (31.25) | 8.153 | 0.004 | 14 (43.75) | 18 (56.25) | 4.461 | 0.035 |
MACC1:High≥0.782±0.033;miR-338-3p:High≥0.320±0.014.(1)Fisher exact probability method. |
Log-rank和Cox回归分析 Log-rank单因素分析miR-338-3p表达、MACC1表达、年龄、临床分期、组织分化、组织类型、腹水、淋巴结转移等参数与65例EOC患者复发和死亡的关系, 结果显示miR-338-3p低表达(P=0.038, HR=4.139, 95%CI:1.271~8.078)、临床分期较晚(P=0.022, HR=2.346, 95%CI:1.014~10.329)和淋巴结转移(P=0.007, HR=5.032, 95%CI:2.003~11.371)与EOC患者复发相关; miR-338-3p低表达(P=0.008, HR=3.007, 95%CI:1.217~7.431)、临床分期较晚(P=0.012, HR=3.678, 95%CI:1.204~11.240)、组织分化高级别(P=0.029, HR=4.304, 95%CI:1.742~10.630)和淋巴结有转移(P=0.003, HR=4.432, 95%CI:1.797~10.930)与EOC患者死亡相关。Cox多因素回归分析显示, 上述因素均非EOC患者复发和死亡的独立影响因素。
Kaplan-Meier生存分析 截至2018年2月底随访结束时, 入组患者随访时间为16~61个月, 中位随访时间38个月, 46人存活, 19人死亡(表 3)。在65例EOC患者中, miR-338-3p低表达同时MACC1高表达患者的总体生存率和无进展生存率均显著低于其他类型患者(χ2=16.960, P=0.001;χ2=18.930, P=0.000)(图 3)。
(n) | |||||
FIGO stage | Case | Stable | Recurrence | Death | |
< 2 times | ≥2 times | ||||
Ⅰ | 8 | 7 | 1 | 0 | 0 |
Ⅱ | 4 | 3 | 1 | 0 | 0 |
Ⅲ | 48 | 16 | 9 | 9 | 14 |
Ⅳ | 5 | 0 | 0 | 0 | 5 |
Total | 65 | 26 | 11 | 9 | 19 |
卵巢癌是威胁女性生殖健康的主要疾病之一, 大部分患者发现时临床分期较晚, 盆腹腔存在癌灶广泛侵犯和转移是患者预后较差的重要原因之一。研究卵巢癌侵袭和转移的分子机制, 是卵巢癌基础和临床研究中的严峻课题。miRNAs是一种高度保守的内源性非编码小RNA。人类基因组中有千余种miRNA, 这些miRNA调控约1/3蛋白质编码基因的表达, 是最大的一类基因表达调控因子, 在多种生理和病理过程中发挥重要作用[15]。miRNAs还与上皮-间质转化(epithelial-mesenchymal transition, EMT)、血管生成、肿瘤细胞微环境等恶性肿瘤侵袭和转移相关过程关系密切, 参与包括卵巢癌在内的多种恶性肿瘤的侵袭和转移, 可作为恶性肿瘤治疗的潜在靶点[16-18]。
研究显示, miR-338-3p在胃癌、结肠癌、甲状腺癌等恶性肿瘤组织中的表达水平明显低于正常组织, 可能作为抑癌基因参与上述恶性肿瘤的侵袭和转移[2-7]。MACC1与多种恶性肿瘤的侵袭和转移密切相关, 本课题组前期采用免疫组织化学法、RT-PCR法和Western blot法研究显示, EOC组织中存在MACC1 mRNA和蛋白质异常高表达, 临床分期越晚、组织分化越差、伴随淋巴结转移的癌组织中MACC1 mRNA和蛋白质表达越高, MACC1表达增加可能提示EOC患者预后不良, MACC1可作为晚期EOC预后监测的标志物[19-21]。本研究采用RT-PCR技术检测正常卵巢组织、良性上皮性卵巢肿瘤和EOC组织中miR-338-3p和MACC1基因的表达情况, 结果显示与正常卵巢组织和良性上皮性卵巢肿瘤相比, EOC组织中miR-338-3p表达明显降低且MACC1基因表达明显增高, 提示二者异常表达可能参与卵巢癌的发生和发展。
miRNAs主要通过靶向调控下游相关基因的表达或信号通路的活性, 进而参与各种生理和病理过程。在恶性肿瘤的发生发展过程中, 多数miRNAs参与调控癌基因或抑癌基因, 甚至同一个miRNA在不同的癌组织中表现出相反的调控作用[22]。研究表明, 胃癌、肝癌、宫颈癌等恶性肿瘤组织中存在miR-338-3p低表达和MACC1基因高表达, miR-338-3p可靶向调控MACC1基因, 进而参与恶性肿瘤的侵袭和转移[12-14]。本研究中, 经miRNA调节靶基因在线开放数据库检索显示, MACC1基因是miR-338-3p的下游调节靶基因之一。目前尚无卵巢癌组织中miR-338-3p靶向调控MACC1基因的相关报道。本研究进一步分析表明, 不同性质卵巢组织中miR-338-3p和MACC1的表达呈明显负相关, 临床分期越晚、组织级别越高、伴淋巴结转移的EOC组织中miR-338-3p表达越低且MACC1表达越高, miR-338-3p低表达与EOC患者的复发和死亡相关, miR-338-3p低表达同时MACC1高表达患者的总体生存率和无进展生存率显著降低。上述结果提示miR-338-3p低表达和MACC1高表达可能与EOC患者预后不良相关, 结合既往相关报道推测可能是miR-338-3p靶向调控MACC1的表达, 进而共同参与卵巢癌的进展和复发, 二者有作为卵巢癌预后不良标志物的潜在价值。
综上所述, 本研究结果显示EOC组织中存在miR-338-3p和MACC1异常表达, 且与患者的预后不良相关, 二者可能共同参与EOC进展和复发。在此基础上进一步研究卵巢癌细胞中miR-338-3p靶向调控MACC1基因的分子机制, 进一步阐明卵巢癌侵袭和转移的分子机制, 可为临床探寻新的卵巢癌治疗的分子靶点, 从而为卵巢癌的精准治疗提供新的方向。
[1] |
IORIO MV, CROCE CM. microRNA involvement in human cancer[J]. Carcinogenesis, 2012, 33(6): 1126-1133.
[DOI]
|
[2] |
LIU S, SUO J, WANG C, et al. Downregulation of tissue miR-338-3p predicts unfavorable prognosis of gastric cancer[J]. Cancer Biomark, 2017, 21(1): 117-122.
[DOI]
|
[3] |
GAEDCKE J, GRADE M, CAMPS J, et al. The rectal cancer microRNAome-microRNA expression in rectal cancer and matched normal mucosa[J]. Clin Cancer Res, 2012, 18(18): 4919-4930.
[DOI]
|
[4] |
SUI GQ, FEI D, GUO F, et al. MicroRNA-338-3p inhibits thyroid cancer progression through targeting AKT3[J]. Am J Cancer Res, 2017, 7(5): 1177-1187.
|
[5] |
LI Y, CHEN P, ZU L, et al. MicroRNA-338-3p suppresses metastasis of lung cancer cells by targeting the EMT regulator Sox4[J]. Am J Cancer Res, 2016, 6(2): 127-140.
[PubMed]
|
[6] |
HUANG XH, CHEN JS, WANG Q, et al. MiR-338-3p suppresses invasion of liver cancer cell by targeting smoothened[J]. J Pathol, 2011, 225(2): 463-472.
[URI]
|
[7] |
CHEN X, PAN M, HAN L, et al. MiR-338-3p suppresses neuroblastoma proliferation, invasion and migration through targeting PREX2a[J]. FEBS Lett, 2013, 587(22): 3729-3737.
[DOI]
|
[8] |
SHIRAHATA A, SHINMURA K, KITAMURA Y, et al. MACC1 as a marker for advanced colorectal carcinoma[J]. Anticancer Res, 2010, 30(7): 2689-2692.
[URI]
|
[9] |
SHIRAHATA A, SAKATA M, KITAMURA Y, et al. MACC 1 as a marker for peritoneal-disseminated gastric carcinoma[J]. Anticancer Res, 2010, 30(9): 3441-3444.
[URI]
|
[10] |
SHIMOKAWA H, URAMOTO H, ONITSUKA T, et al. Overexpression of MACC1 mRNA in lung adenocarcinoma is associated with postoperative recurrence[J]. J Thorac Cardiovasc Surg, 2011, 141(4): 895-898.
[DOI]
|
[11] |
SHIRAHATA A, FAN W, SAKURABA K, et al. MACC1 as a marker for vascular invasive hepatocellular carcinoma[J]. Anticancer Res, 2011, 31(3): 777-780.
[URI]
|
[12] |
HUANG N, WU Z, LIN L, et al. MiR-338-3p inhibits epithelial-mesenchymal transition in gastric cancer cells by targeting ZEB2 and MACC1/Met/Akt signaling[J]. Oncotarget, 2015, 6(17): 15222-15234.
[PubMed]
|
[13] |
ZHANG T, LIU W, ZENG XC, et al. Down-regulation of microRNA-338-3p promoted angiogenesis in hepatocellular carcinoma[J]. Biomed Pharmacother, 2016, 84: 583-591.
[DOI]
|
[14] |
HUA FF, LIU SS, ZHU LH, et al. MiRNA-338-3p regulates cervical cancer cells proliferation by targeting MACC1 through MAPK signaling pathway[J]. Eur Rev Med Pharmacol Sci, 2017, 21(23): 5342-5352.
[PubMed]
|
[15] |
LEWIS BP, BURGE CB, BARTEL DP. Conserved seed pairing, often flanked by adenosines, indicates that thousands of human genes are microRNA targets[J]. Cell, 2005, 120(1): 15-20.
[DOI]
|
[16] |
TODEN S, OKUGAWA Y, JASCUR T, et al. Curcumin mediates chemosensitization to 5-fluorouracil through miRNA-induced suppression of epithelial-to-mesenchymal transition in chemoresistant colorectal cancer[J]. Carcinogenesis, 2015, 36(3): 355-367.
[DOI]
|
[17] |
SHEN G, LI X, JIA YF, et al. Hypoxia-regulated microRNAs in human cancer[J]. Acta Pharmacol Sin, 2013, 34(3): 336-341.
[DOI]
|
[18] |
SLABY O, LAGA R, SEDLACEK O. Therapeutic targeting of non-coding RNAs in cancer[J]. Biochem J, 2017, 474(24): 4219-4251.
[DOI]
|
[19] |
张瑞涛, 史惠蓉, 黄好亮, 等. MACC1、HGF和C-met蛋白在卵巢上皮性癌中的表达及其意义[J]. 南方医科大学学报, 2011, 31(9): 1551-1555. [URI]
|
[20] |
张瑞涛, 任芳, 史惠蓉. 不同期别卵巢上皮性癌组织中结肠癌转移相关基因1表达[J]. 中国医学科学院学报, 2014, 36(1): 47-51. [DOI]
|
[21] |
ZHANG RT, SHI HR, CHEN ZM, et al. Effects of metastasis-associated in colon cancer 1 inhibition by small hairpin RNA on ovarian carcinoma OVCAR-3 cells[J]. J Exp Clin Cancer Res, 2011, 30: 83.
[DOI]
|
[22] |
ZAMORE PD, HALEY B. Ribo-gnome:the big world of small RNAs[J]. Science, 2005, 309(5740): 1519-1524.
[DOI]
|